linux 自旋锁不能睡眠:正常大鼠原代心肌细胞培养

来源:百度文库 编辑:中财网 时间:2024/04/28 20:59:19
正常大鼠原代心肌细胞培养 一、实验试剂1、培养基: PriCells Medium + 10% FBS + 1% P/S + PriCells Supplement2、冻存液: PriCells Medium + 20% FBS + 10% DMSO3、洗涤液: 1×PBS(pH 7.4)+ 1% P/S4、染色液: 0.4% Trypan Blue5、消化液: PriCells Isolation of Primary Cell Kit6、检测试剂:一抗小鼠抗大鼠α-横纹肌肌动蛋白,二抗FITC标记山羊抗小鼠IgG,乙醇丙酮混合液(1∶1) 二、实验器械1、培养皿2、培养瓶3、直剪和眼科剪4、眼科镊5、200目网筛6、玻璃滴管7、烧杯8、15ml离心管 三、实验流程取材↓取心肌组织放入D-Hanks中洗涤3次↓剪碎至1mm3 +消化液(PriCells)↓37℃水浴8min,吸弃上层悬液(非心肌细胞)↓ 余下组织加消化液(PriCells) 37℃磁力搅拌10min,60r/min↓上层悬液加消化终止液(PriCells)↓余下组织再加消化液(PriCells)继续消化3-5次↓收集所有混悬液过200目网筛↓收集滤液1000RPM/10min↓去上清,收集沉淀,2ml培养基重悬↓染色计数四、实验操作1、培养瓶预包被。试验前一天预包培养瓶,置于超静台吹干或45℃烘箱烘干(切记保持无菌),4℃冰箱放置,备用。 2、取材:出生1—3天幼鼠。 3、材料预处理:将获取的心脏放入含有1% P/S的1×PBS(pH 7.4)中,剪去心房,反复洗涤,至心室内无血渍,洗涤液澄清为止。 4、消化:将心室肌用眼科剪剪成1mm3 大小组织块,加入消化液10ml,37℃水浴8min后,吸取上层混悬液遗弃;余下组织加入消化液10ml,37℃水浴并用磁力搅拌器搅拌10min;吸取上层混悬液,终止反应;剩余沉淀物再加消化液消化3-5次,直至组织块完全消化。 5、终止消化:按1∶1加入消化终止液,中止酶反应。 6、收集重悬细胞:收集中止后的消化液于离心管中,1000 rpm,离心10 min,弃去上清,加入培养液重悬,染色计数细胞。 7、培养细胞密度:调整细胞密度以5 × 105 个/ml 接种入培养瓶。 8、培养:放置于37℃,5% CO2 培养箱中。 五、细胞鉴定 1、显微鉴定:接种后12h细胞形态变为梭形或不规则扁平状,24h后即可看到单个细胞的自发收缩,继而细胞逐渐铺展伸出伪足,形成不规则的星形,到第3~4天,细胞相互接触交织成网,形成细胞单层或细胞簇。 2、免疫组织化学鉴定:利用α-横纹肌肌动蛋白抗原检测。 3、细胞爬片。将洗净的盖玻片放入6孔培养板中,接种细胞为3×104 个/孔,48小时候细胞可以长满,用镊子取出铺满细胞的盖玻片备用。 4、细胞固定:用PBS洗涤细胞,之后放入乙醇丙酮混合液中,固定10min,空气中自然干燥。 5、特异性抗体:按照说明书稀释比要求稀释抗体,加入抗体,放置4℃孵育过夜。 6、洗涤:1×PBS(pH 7.4)洗涤3次×15分钟,晾干。 7、标记性抗体:加入荧光标记抗体,37℃孵育1h。洗涤:1×PBS(pH 7.4)洗涤3次×15分钟,晾干。 8、封片:封片剂封片。 9、镜检:荧光显微镜下观察,可见胞浆呈棕黄色染色,表明细胞对α-横纹肌肌动蛋白的表达呈阳性。 六、注意事项 1、选用出生1-3d的幼鼠。 2、在取出心脏之前给实验鼠进行消毒处理。 3、采用多次消化,直到组织块完全消化,减少消化液对细胞的损伤。 4、由于心肌细胞只占总细胞的25%,在接种心肌细胞之前做差速贴壁,除掉大部分成纤维细胞。 5、初分离获得的心肌细胞在生理浓度的钙离子溶液中易丧失收缩活性, 为了保持心肌细胞的收缩功能, 在分离的过程中应采用4℃的无钙离子Hanks'缓冲液浸泡和冲洗心肌组织。 七、 PriCells 细胞图片