中财网角都好还是地怨虞好:标本采集手册
来源：百度文库 编辑：中财网 时间：2024/04/20 16:22:01
第一章 概述
实践证明，为保证临床检验质量，必须做到全过程质量控制,即对实验室检查的全过程进行全面的质量控制和质量管理。这里包括：实验前(分析前) 、实验中(分析中) 和实验后(分析后)三个阶段的质量控制,其中实验前质量控制是全面质量控制的前提。国内外均有报道,检验结果误差中70%左右来自实验前(分析前),而且实验前(分析前)误差是仪器、试剂、质控品和标准品等再好也无法解决的。因此,必须注意做好实验前质量管理。
一 实验前质量控制主要包括：
（一）患者的准备；
（二）标本的采集；
（三）标本的储存；
（四）标本的运送；
（五）标本送出及签收；
（六）标本的处理；
（七）已知的和需考虑的生物因素和干扰因素等。
（一）患者的准备
根据所采标本的类型和所分析的物质而定。标本采集前患者的状态对检测结果有一定的影响，不同检测项目对标本采集前患者的状态有不同的要求。许多非疾病因素，如是否空腹、精神状况、体力活动、使用药物等都可能影响检验结果。因此，在标本采集前，要根据需要对患者做好相应的准备。一般要求患者处于安静状态；晨起时的精神、体力、情绪等因素的影响较小，是大部分标本采集的最佳时间；如可能，患者最好停服干扰检测的药物；根据项目和标本类别选择相应的容器。
许多检测对饮食、饮水和药物有特殊要求，如：静脉采血前至少要空腹 8小时；血脂测定须禁食 12-14h后采血；情绪紧张会使血糖升高；吗啡、可卡因可使淀粉酶(AMY)升高；微生物培养最好在使用抗生素之前；采血样之前按摩前列腺可引起酸性磷酸酶的升高；醛固酮检测要在起床活动前取卧位血，起床后活动 2 小时取立位血；尿液检查按不同项目分别留取晨尿、随机尿、计时尿；大便潜血检查前要素食，禁食含动物血的食物等。具体要求后述。
（二）标本的采集
1.正确的采集标本是保证检验质量的基础。要注意以下问题：
（１）避免干扰物污染，特别是定量分析标本；
（２）标本采集部位和方法要正确；
（３）标本标识一定要清晰无误；
（４）无人为的溶血和混浊因素：如收集标本用力震荡或用玻璃棒及木棍搅拌会导致溶血；餐后采血会出现脂血而致血清、血浆混浊。
（５）合理使用抗凝剂及防腐剂；
（６）收集区温度最好不超过20℃；
（７）微生物检验标本采集严格无菌概念；
（８）标本采集后要尽快送至实验室。
2.标本采集时间：
（１）空腹标本：一般指空腹8h后采集的标本。清晨空腹血液标本常用于临床生化定量测定，受饮食、体力活动、生理活动等的影响较小，易于发现和观察病理情况，而且重复性较好。
（２）随时或急诊标本：指无时间限制或无法规定时间而必须采集的标本，被检者一般无法进行准备。随时或急诊标本主要用于体内代谢比较稳定以及受体内因素干扰少的物质的检查，或者急诊、抢救病人必须做的检查。
（３）指定时间标本：即指定采集时间的标本，根据不同的检测要求有不同的指定时间，如 24h 尿蛋白定量、葡萄糖耐量试验、内分泌腺的兴奋或抑制试验、肾脏清除率试验等。
3.采集方法：具体方法见第二部分内容。
（三）标本的储存
标本采集后应尽快送至实验室，若不能及时送检，已采集的标本要按检验规定的贮存条件，如室温、冷藏、冰浴、温浴或防腐贮存，将标本直立置于稳定、干燥、避光、密闭的环境中，避免振摇，以免标本渗漏或溶血影响检测结果。血液标本采集后应及时分离血清或血浆，否则可发生红细胞与血清之间成分的相互转移，或红细胞中的某些酶分解待测物等，从而影响检验结果。中心已检标本的保存条件和保存时间明细表请见附录1。
（四）标本的运送
必须保证运送后标本所分析的结果与刚采集标本后分析的结果一致。
１标本运送要注意防止标本外溢、蒸发和污染，用有盖容器采集、运送标本；
２严格控制温度,如遗传系列检测标本需要置于18~
３运输过程中对于所有感染性物质（包括血液）的溢出物，可采用以下清除程序：
（１）戴好手套。
（２）用布或纸巾覆盖并吸收溢出物。
（３）向布或纸巾上倾倒消毒剂，包括其周围区（通常可用含氯消毒剂）。
（４）使用消毒剂时，从溢出区域的外围开始，朝向中心进行处理。
（５）经约30 分钟后，清除这些物质。如果现场有碎玻璃或其他锐器，则用畚箕或硬质纸板收集并将其存放于防刺穿容器内以待处理。
（６）对溢出区进行清洁和消毒（如有必要，重复第2～5 步）。
（７）将受污染的材料置于防漏、防刺穿的废弃物处理容器内。
（８）经成功的消毒后，向主管机构通报溢出事件，并说明已经完成现场清除污染工作。
（五）标本送出及签收
临床工作人员从病人采集标本并将标本从临床运送到实验室及实验室人员接收临床标本，均应按标准化要求进行，并且一定要做到认真核对，包括标本来源、标本属性、检查项目、标本采集和运送是否合乎要求等，标本送出人员和标本接收人员都要做认真的记录并签字存档。
（六）标本的处理
１实验室接收标本后应及时正确地予以处理，否则会影响检测结果的准确性。
２如取血后未尽快转送或分离血清、血浆，血清与血细胞长时间接触可发生以下变化：
（１）由于血细胞的酵解作用，血糖以每小时5％～15％的速率降低，即使在真空采血管中在较低温度下每小时也会降低1.9％，糖酵解产物乳酸和丙酮酸升高。
（２）由于红细胞膜通透性增加和溶血加重，红细胞内化学成分发生转移和释放，酶活性受影响，血清无机磷、钾、铁、乳酸脱氢酶、天门冬氨酸转移酶、肌酸激酶等升高。
（３）由于酯酶作用，胆固醇酯因分解而减少，游离脂肪酸增加。
（４）酸性磷酸酶测定血标本室温放置1～2h测定结果降低 50%。
（５）电解质测定血标本未及时分离血清和血浆，可导致血钾测定结果偏高。
３实验室接收标本后的处理应注意以下事项：
（１）时间：实验室接受标本后应尽快给予分类和离心。① 促凝标本采血后5～1 5 min尽早处理；② 抗凝标本可采血后立即离心；③ 非抗凝(无促凝)标本采血30～60min后离心；④ 抗凝全血标本(全血细胞分析、ESR、TnT等)不需要离心。
（２）温度：一般标本为室温(最好是22~
（３）采血管放置：应管口(盖管塞)向上，保持垂直立位放置。
（４）采血管必须封口：管塞移去后会使血 PH 改变，影响结果，如可使 PH、Ca2+增高，使 ACP减低；封口可以减少污染、蒸发、喷溅和溢出等。
（七）已知的和需考虑的生物因素和干扰因素
分析前的可变因素：
１生物因素：可引起所检测物质在体内的变化，此种变化与检测方法无关，分为可变的因素和固定的生物因素：
（１）可变的生物因素：包括营养、禁食、饮酒、体重、肌肉重量、体力活动、姿势、气候、身高、作息规律、治疗药物；
（２）固定的生物因素：包括性别、年龄、种族和遗传因素。
２干扰因素：在收集和分析标本过程中，干扰因素常导致分析结果与被测物真实浓度不符。将内在干扰因素即机体内自身的因素和外在的干扰因素区别开来。内在干扰因素主要包括：
（１）溶血、脂血、胆红素血；
（２）内源性物质如抗凝药物、治疗药物及其代谢产物、输注液等；
（３）外源性物质与标本混合在一起，如抗凝剂、残留的洗液、细菌、霉菌。
二 标本采集的基本原则
１申请单填写要点
每个检验项目或组合检验项目送一份标本，每一份标本附一张申请单。按照检验项目申请单的要求，采集特定的标本，并将标本送到指定的实验室。因此，检验申请单是实验检查的第一步。
（１）病人身份识别信息：申请者必需清楚填写病人的姓名、性别、年龄、或其它有效识别身份的编号；
（２）病人的病历信息：申请者必需清楚填写病人所在临床科室名称、病历号、床号、临床诊断、临床样本、样本的采集日期和时间(年、月、日、时、分)、申请者姓名、申请检验日期；
（３）申请的检验项目：申请者必需清楚填写检验项目名称，项目名称应规范、准确，特别是申请组套项目时，一定要与本中心《检验目录》的组套内容一致，否则需填写具体单项；
（４）追加检测项目时限：在样本有效保存期间和检测结果不受影响的情况下，客户可申请追加检测项目，追加申请需填写检验申请单。可传真和电话委托客服追加检测项目，但事后一周内需补填《标本接收单》；
（５）修改报告单病人全名：因字迹不清要求修改的由客服直接修改，如果与原申请单上的名字出入很大的要求修改，需要提供医院证明！
（６）有艾迪康专用的申请单(如病理、遗传等检测)，请使用专用申请单。
备注:有关的临床和治疗信息，特别是用药信息是检验师评价结果的必要条件。药物可能在体外影响分析方法或在体内引起病理变化，因此，要特别注意在申请单上提供此类信息。
２采集标本前，首先要核对申请单病人基本信是否属实；然后核对收集标本用容器、标识与申请单上信息是否相符合，查对合格后再采集或收集标本。
３收集足够的标本于适当的容器内封好口后及时送检。采集静脉血时要正确使用真空采血管取血至刻度，在取下采血管的同时立即将该采血管轻轻颠倒混匀 5～8 次，使试管内预置的添加剂与血样充分混匀，但不可剧烈摇晃以免造成标本溶血。
４已采集的标本若不能及时送检，要严格按检验规定的贮存条件暂存。未按要求采集、储存、运送的标本将被视为不合格标本处理。
５在标本采集、送检的过程中遇到任何不明或失误之处，请及时与相应检验专业组联系，以避免或减少差错发生。
６禁止利用患者申请单送检其他人或动物标本。
７不详之处或新开展项目请预先联系!
三 关于实验室标本拒收规定
实验室专业负责人同意并有项目检验人员签字，及时与临床沟通，有下列情况时可考虑标本拒收：
１标本属性不清、标记错误或无标记、标本标识与申请单标识不符；
２抗凝剂比例错误；
３标本收集管使用错误：
（１）ESR、血清D-二聚体应使用枸橼酸钠(黑帽)抗凝管；
（２）血醛固酮应使用肝素(绿帽)抗凝管；
（３）K+、N a+、Ca2+可用非抗凝血，绝对不能使用草酸钾、草酸钠抗凝管；
（４）血NH4+和含氮物质测定用草酸氨抗凝是错误的，应用血清管(红帽)；
（５）全血细胞分析、ABO 血型测定必须用 EDTA(紫帽)抗凝管。
４微生物室拒收标本：
（１）储存、运送不当(该冷藏而未冷藏的标本)，被污染的微生物标本；
（２）痰、便标本已干；
（３）尿标本未用无菌瓶留取；
（４）厌氧培养标本未按要求取材及送检；
（５）其他无菌部位取材及送检时已被污染的标本。
５病理实验室拒收标本：
（１）送检标本上无条形码或条形码与病理检查申请单上的不符；
（２）仅有标本而无相应病理标本送检单、仅有送检单而无相应标本或标本瓶内无标本；
（３）送检标本上无病人名字，或送检单与标本病人名字不符合；
（４）标本容器内无固定液、固定不佳导致标本自溶、腐败、干涸；
（５）拒绝接收不完整手术标本(部分标本)，以防止未有病变部位(如肿瘤部分缺失)引起误诊；
（６）送检单不规范者(如用处方、便条等填写)，病理标本送检单重要项目(如病史、手术所见等)不填写、填写不全或字迹潦草难以辨认者；
（７）标本种类或数量与送检单中所提供的不一致者，或标本其它特点(如体积、形态等)与送检单中的明显不符者；
（８）本中心暂未开展的特殊病理项目。
６其它各种未按标准留取、送检的标本。
四 异常情况处理流程
１ 标本量及性状异常时的处理流程
（１）标本量少，无法按要求完成所有项目的检测，本中心将优先检测 24小时报告的项目，敬请谅解。
（２）重度溶血的标本对 K、GLU、TP、CK、CK-MB、LDH、HBDH、AST、r-GT、AFU、微量元素等项目的结果影响较大，中心建议重新送检。
２ 复查的处理流程
若客户对结果有疑问，请在标本的保存期内提出（详见本册后附录 2的已检标本保存期），中心评估后，予以复查。
３ 标本补送的处理流程
（１）由于标本量少、标本污染、性状不符合等原因造成无法完成检测，本中心将通知客户补送标本；
（２）客户补送标本时，接收员提供新的条形码以区别于原标本，并在单据上填写“补送”字样；
（３）实验室根据相应信息，安排检测。
４ 项目加做的处理流程
（１）如果客户要求加做项目，请联系客服部，客服部通知实验室评估标本量等；
（２）评估合格后，客服部将通知标本接收员填写标本接收单，请客户签字，随当天接收的标本一起运送至中心；
（３）报告时间以项目册上承诺的时间为准。
５ 其他
如客户来电要求或申请单注明需要当晚立即报告结果的，请务必提供准确的联络方式，本中心核对信息后进行口头报告，书面报告单按正常程序发送。
第二章 标本采集方法
一 血液检验标本采集方法
血液检验标本分为全血、血浆、血清等。全血标本主要用于临床血液学检查,例如血细胞计数和分类、形态学检查等；血浆标本适合内分泌激素、血栓和止血检测血清标本多适合于临床化学和免疫学的检测。
按照血标本采集部位的不同，分为静脉血、动脉血和毛细血管血三种。绝大多数检查采用静脉血,少数检查如血气分析、乳酸和丙酮酸测定等需要采集动脉血，毛细血管血主要用于各种微量法检查或大规模普查。
静脉血是最常用的实验室检查标本，真空采血法是最好的静脉血采集技术。基本原理是双向针的一端插入真空试管内，另一端在持针器的帮助下刺入静脉，血液在负压作用下自动流入试管内。由于在完全封闭状态下采血，避免了血液外溢引起的污染，并有利于标本的转运和保存。标准真空采血管采用国际通用的头盖和标签颜色显示采血管内添加剂种类和检测用途，可根据需要选择相应的盛血试管。
（一）静脉血采集方法、注意事项和采集样品所用材料的安全处置：
1止血带或压脉器：采集静脉血时，止血带压迫静脉时间不宜过长,以不超过 40秒为宜，否则容易引起淤血、静脉扩张，并且影响某些指标的检查结果,如乳酸升高、pH 值降低、K+、Ca2+、肌酸激酶升高等。
2 采血时间与部位：大多数化验检查要求清晨、空腹、采集静脉血应尽可能避免在输液同时取血,输液不仅使血液稀释，而且对实验室检查结果发生严重干扰，特别是血糖和电解质。
3 避免溶血、杂质污染：采血器具必须无菌、干燥、洁净．避免特别用力抽吸和推注、避免化学污染和细菌污染引起的溶血。因为红细胞的某些成分与血清(浆)不同，样本溶血可使红细胞某些成分释放,影响实验室检查结果。
4血样的采集：血样要求在每一天的同一时间采集，理想的时间是早晨 7：00到 8：00，尤其是监测为目的时，更要保证标本采集时间的统一。最后一次食物和液体摄入应在前一天下午 6：00 到7：00 (急诊检验例外)。
血样采集应在不服药期间，如在早晨服药前。血样采集时，患者应仰卧位，采血点应在同一静脉区，通常为手臂静脉。
5标本采集后须立即送检，放置过久影响检验结果。当取血不顺利时,切忌在同一处反复穿刺，易导致标本溶血或有小凝块，影响检测结果。
6采集血培养标本时应先注射厌氧瓶，尽量减少接触空气时间。
7微量元素测定采集标本的注射器和容器不能含游离金属。
8采集样品所用材料的安全处置：
使用后的采血针、注射器针头等锐器物应当直接放入不能刺穿的利器盒内或毁型器内进行安全处置,禁止对使用后的一次性针头复帽,禁止用手直接接触使用过的针头、刀片等锐器物注射器针筒、棉签等其他医疗废物放入黄色医疗废物袋中，医疗废物和生活垃圾分类收集存放。消毒毁形后的医疗废物必须交给指定的医疗废物处理厂，不得擅自废弃。
（二）临床化学/免疫检验标本
临床化学/免疫检验多用非抗凝血标本,最好使用真空负压采血管。
标本采集主要注意事项有：
1化学项目大多数需要空腹采静脉血，多个单项化学检测项目组合检验时一般可采 l管血；
2采血量视检查项目多少不同而异，通常为4.0～5 .0ml；
3多个组合检测项目同时采血时应按下列顺序采血：
血培养→无添加剂管→凝血管→有添加剂管
有添加剂管的顺序为：橼酸盐管→肝素管→EDTA管→草酸盐／氟化钠管
4 不论是抗凝血还是非抗凝血，为了缩短血清或血浆与血细胞的接触时间，血液标本收集后，须尽可能早地将血清或血浆从全血中分离出来，避免由此而影响检验结果的准确性。从血液标本采集开始，必须在2h内将全血处理为血清或血浆。
（１）血清(非抗凝血)：采血后标本于 22～25℃(室温)15～30min 后可自行(自发)完全凝固，禁用木棍和玻棒等剥离凝块冷藏标本凝集较慢，加促凝剂者凝集加快。
（２）血浆(抗凝血)：应采用抗凝管采血,采血后立即颠倒混合 5～10 次，采血后数分钟内可离心分离血浆。
（３）冷藏标本：用于稳定血液中温度依赖性成分(抑制细胞代谢)的检测项目，标本于 2～8℃冷藏(标本采集后立即置于冰箱中，冷藏必须充分)；标本需冷藏的测定项目有：儿茶酚胺、胃泌素、甲旁素、PH／血气、NH3、乳酸、丙酮酸等。全血标本一般不冷藏，血钾测定标本冷藏不得>2h。全血标本切忌冷冻。
（４）代谢抑制剂和防腐剂的应用：用于抑制细胞代谢。血标本中加入氟化钠后，血细胞未分离情况下血标本中Glu，22～25℃稳定24h．2～8℃稳定48h；氟化钠不适用于新生儿及儿童的Glu测定(因儿童PCV高，细胞糖酵解难以控制)；氟化钠一麝香草酚混合剂不适合酶学检测(因氟化钠一麝香草酚混合剂抑制酶活性)）；甲醛草酸钾抗凝保存剂不适用于血糖测定。
（三）红细胞沉降率（血沉，ESR）检测标本
静脉采集枸橼酸钠(109mmol／L，即
采血注意事项：
1单独采1管血，准备采血至2 ml刻度线（抗凝剂：全血=1：4）；
2采血后立即上下颠倒混合5~10 次；
3采血后应尽快送检（必须 2h内检测）。
（四）血常规（全血细胞分析）检验标本
一般用EDTA 1.5～2.2mg／ml抗凝(EDTA抗凝采血管-紫帽管)。
采血注意事项：
１采血后立即上下颠倒混匀，5～10次．不可用力震荡；
２应按抗凝管刻度采血至 2ml，可不用空腹；
３采血后应尽快送检(需显微镜观察形态的标本采血后应及时推片固定，因为超过 2 小时WBC形态会发生改变)；
４血型与血常规可采1管血。
（五）75克葡萄糖耐量试验（OGTT）/胰岛素释放试验/C-肽释放试验
１病人准备：试验前3日，每日进食碳水化合物量不低于 250-300 克，且维持正常活动，影响试验的药物（如：咖啡因、口服避孕药、水杨酸盐等）应在3 日前停用，试验前病人应 10～16小时不进食。
２标本采集：临床上常用方法是清晨抽空腹血后，口服 75 克葡萄糖，再于给糖后 0.5、1、2、3 小时各采血2ml /1次（共5次）。
３标本保存：采血后1小时内分离血清并及时冷藏送检或采用血糖专用抗凝管采血，于 2～8℃保存。
（六）高血压系列检验标本
1高血压三项（肾素、血管紧张素I、II）
（１）病人准备：β-阻断剂、血管扩张剂、利尿剂及甾体激素、甘草等影响体内肾素水平，一般要在停药后2周测定肾素活性(PRA)，利血平等代谢慢的药物应在停药 3 周测定。不宜停药的病人改服胍乙啶等影响PRA较小的降压药。钠摄入量影响机体 PRA 水平，故病人测定 PRA 前 3 天应适当减少食盐摄入量，最好同时测定取血前24小时尿钠含量，以供分析PRA结果时参考；
（２）标本采集：静脉取血 4～5ml，拔除针头后缓慢注入到专用抗凝管中,盖好管塞后上下颠倒 5 次,混匀后 2500 转/分,离心 5～10 分钟,分离血浆,将血浆装入专用血浆管后低温送检。如不能立即送检,需尽快冰冻保存（-15℃）。溶血标本不能检测；
（３）标本类型、标本量：专用抗凝管采血，分离血浆，取 2ml送检；
（４）标本保存：低温冰箱保存（-15℃以下），可保存 2 个月；
（５）注意事项：申请单上应注明抽血时的体位(卧位：病人在早上 6-8时起床前，取静脉血；立位：病人起床后活动 3小时，取静脉血。)和饮食情况(普食饮食、低钠饮食)；标本未及时分离血浆、反复冻融、溶血、保存不当、使用过期抗凝管等均可使结果受到影响。
2醛固酮
（１）病人准备：留样前应停服利尿剂至少 3 周，停服抗高血压药物 1 周；
（２）标本采集：血浆醛固酮测定应采用肝素抗凝，采集后立即分离血浆，置-20℃保存待测；尿液标本则留取24小时尿量，用10～15mL浓盐酸防腐；
（３）申请单上注明：抽血时的体位（卧位、立位）和饮食情况（普食饮食、低钠饮食）；尿液标本要准确记录24小时尿量。
（七）皮质醇标本采集及注意事项
正常人皮质醇的分泌存在昼夜节律，一般为早上 8 点或下午 4 点采血，送检时请务必在申请单上注明采血时间。
（八）T细胞亚群标本采集及注意事项
１标本类型：必须用肝素钠抗凝血。
２标本量：2ml。
３该项目在不同年龄段的参考值不尽相同，所以送检时请务必在申请单上注明病人年龄。
（九）微量元素检测标本采集要求
１采血时不能戴乳胶手套（对锌有污染），可使用“PE”（塑料）手套(或不戴手套把手洗干净) 。
２橡皮塞对锌有污染，故普通采血管不可使用，建议使用本中心提供的专用管 (专用管有三种，贴红标签管为铅、硒专用管，即全血管，内有肝素；贴蓝标签管为血浆分离管，内有肝素；贴黄标签管为锌铜铁钙镁专用管，即血浆管)。
３使用专用管前，请检查红、蓝色标签管中是否有肝素（液体或白色晶体粉末）,开盖前请轻磕管底，将盖子上吸附的肝素弹下。
４采集方法：采静脉血 2.5～3mL，将 0.5mL 血液注入全血管(红标签管)，粘上条形码，用于血铅和血硒的检测；将剩余2.0～2.5mL血液注入血浆分离管(蓝标签管)，立即轻轻颠倒混匀，以 2000r/min离心 5分钟，再吸取血浆（约 1mL）至血浆管(黄标签管)，粘上条形码，用于检测锌铜铁钙镁；最后将全血管(红标签管)和血浆管(黄标签管)装入自封袋送检。
５如不能及时送检，应放置2-8℃冰箱保存。
６溶血对结果影响较大，应尽量避免。若血浆为溶血标本，视为不合格标本。
（十）遗传学检测标本采集要求
１标本采集：外周血标本可使用中心配送的肝素抗凝管（遗传专用）和采血针进行采集，采集后立即将试管轻轻颠倒混匀，以免凝血；脐带血标本、骨髓标本可以在穿刺成功后，打开中心配送的肝素抗凝管盖，将脐带血或骨髓注入采集管中，立即将试管轻轻颠倒混匀，以免凝血，请注意无菌操作，不要污染管盖。胸腹水标本可在采集后注入废弃生理盐水注射液瓶中，并用 75U/ml的肝素抗凝。请避免使用注射器采集标本后直接注入采集管的方式进行标本采集，以免引起溶血；请勿使用EDTA等抗凝管采集标本。
２标本量：外周血、脐带血、骨髓各4ml；胸腹水 100ml。
３标本送检：合格标本须于采血后当天送至遗传实验室，故请于标本采集后及时通知艾迪康工作人员接收标本；标本有溶血、凝血现象，也视为不合格标本。骨髓标本应尽快送至实验室。
４标本保存：标本采集后置于18～25℃保存，不可冷冻，不可放置于高温环境中。
５申请单填写：请完整填写申请单，尤其是标本采集时间、性别、病史、临床诊断等。
（十一）基因检测标本采集要求
１所有用于基因诊断的标本必须用无菌试管或容器留取,严禁使用肝素抗凝管，采集标本时注意无菌操作。２为避免污染,送检基因诊断标本项目需单人单项目单管。
３采集方法：
（１）血液标本
抽取病人静脉血，置无菌试管中室温自然凝固或 2000 转/分离心，取分离出的血清置 2～8℃保存，不超过24小时，等待艾迪康工作人员接收；血清标本不宜反复冻融；
（２）女性分泌物标本
① 分泌物标本采样应在非月经期进行；采样前 3 天内不使用阴道内药物，不冲洗阴道；24小时内不应有性行为；
② 采集时先用棉签将宫颈口或尿道口过多的分泌物轻轻擦去，更换棉拭子，将棉拭子伸入宫颈，通过上皮交界处，旋转 3～5 周，以保证取得较多的柱状上皮标本，对于怀疑 HPV 感染的患者，尽量采集病变部位标本，可提高HPV的检出率。将取样后的棉拭子放入配套的软管中，旋紧管盖；
③ 男性分泌物标本：先清洁尿道口，将棉拭子伸入男性尿道 1cm，旋转 3～5 次获得标本，将取样后的棉拭子放入配套的软管中，旋紧管盖；
④ 疱疹液或疣体标本：对于生殖器或肛周有疣状体增生，怀疑为尖锐湿疣者，采集疣体表面脱落细胞。用生理盐水润湿棉拭子，用力来回擦拭疣状组织表面三次，取得脱落细胞。将取样后的棉拭子放入配套的软管中，旋紧管盖。
（十二）骨髓检查的要求和注意事项
１涂片要求：二张血片，六张骨髓片，怀疑白血病则需八张骨髓片。骨髓血片注明“B”，骨髓片注明“M”，以示区别。
２申请单注意事项：
（１）病例摘要:应填写全面，尤其是肝、脾、淋巴结、出血状况等与血液病相关的症状以及药物的应用等均应填写清楚；
（２）化验结果：血常规结果一定不能缺，如果可能，MCV、MCH、MCHC及分类也一并填上；
（３）采取骨髓部位也应填上，如果采取骨髓时不顺，应重抽，以免耽误病人；
（４）写上主治医生联系方式，如科室电话、手机号码等（以便与临床密切联系）。
二 尿液常规检验标本采集
（一）尿标本种类
按检查目的，常可采用下列标本：
１晨尿：最好，安静状态下留取清晨第一次尿，该标本为浓缩尿．其细胞和管型等形态完整，适合做各种有形成分的检查和尿蛋白、尿糖等项目的测定。
２随机尿：较常用，适用于门诊和急诊病人常规检验．结果易受多种因素影响。
３空腹或餐后尿：适用于糖尿病、尿胆原、尿蛋白等的检查。
４ 24h尿：用于尿液成分定量检查分析：
（１）24h 尿采集方法：留尿当日早晨 8 时排空尿液，之后每次排尿均收集于一大容器内．至次日早晨 8时最后一次尿液共24小时之间的所有尿液全部收集于洁净容器内。在收集期内每次尿液标本均应放冰箱(
（２）24h尿可用于检测Cr、BUN、K、Na、CL、Ca、P、UPR、UAER等
５特殊实验尿(如 3h、8h、12h 等计时尿和餐后尿等)，则应按医嘱要求进行留尿，并注明用药时间，便于分析比对。
６清洁尿(中段尿、导管尿、膀胱穿刺尿)：用于病原微生物学培养、鉴定和药敏。
（二）尿液标本收集容器要求
１清洁、干燥、有盖、便于标记和转送、一次性使用，有较大开口便于收集；
２避免阴道分泌物、精液、粪便等污染，还应注意避免烟灰、纸屑等异物混入；
３无干扰化学物质(如表面活性剂、消毒剂)混入，不可使用未经洗涤的装药物或试剂的器皿收集标本；
４能收集足够尿液，最好大于50 ml，如收集定时尿，容器应足够大,并加盖，必要时加防腐剂；
５如需培养应在无菌条件下，用无菌容器收集中段尿液。
（三）尿液采集方法
尿液常规检查标本应按以下原则进行采集：
１尿液检验最好留取新鲜标本及时检查，否则尿液生长细菌，使其中的化学成分发生变化。新鲜晨尿最佳,以清晨第一次尿为宜，较浓缩，条件恒定，便于对比。门、急诊患者亦可随机留取。在留取24h或 12h尿液时，尿液标本最好至冰箱保存，也可根据检测目的加入防腐剂(本室未要求使用防腐剂)。
２尿标本的采集方法多采用自然排尿法，需要注意避免阴道分泌物、精液、粪便等污染；对自然排尿困难或需细菌培养者，可在无菌操作下用导尿法或膀胱穿刺法采集。
３尿中某些化学物质及有形成分不稳定，一经排出后易发生物理、化学变化；而尿中原有或污染的细菌生长也可导致成分改变，如葡萄糖被分解。因此，采集的尿应加盖后尽快送检，在采集后 2h内完成有关检查。
４如不能及时送检或收集较长时段尿样,可采取化学防腐(不能用于微生物检查)、冷藏等保存措施；尿液标本冰箱可保存6～8h但细胞等有型成分会有破坏，会有结晶析出。
５根据不同检测目的选择不同的防腐剂：临床最多用的尿液防腐剂为：
（１）甲醛(formalin)，用于尿液有形成分检查，浓度为 400mg／L尿液，即 40％；
（２）甲苯(toluene)，常用于尿糖和尿蛋白等化学成分的定性或定量检查，5～20m1／L尿液；
（３）浓盐酸（hydrochloric acid），用于定量测定尿醛固酮、儿茶酚胺等，浓度为1 m1／L尿液。
６沉渣检查：清晨空腹第一次尿,应在1 h内送检。标本置于干燥、洁净的容器尿杯中，至少
７特殊试验外，晨尿或随机尿要留取中段尿送检，女性在经期不宜做尿液检查。
（四）尿液采集注意事项
１尿液标本必须新鲜，并按要求留取。从排出到检测应在 2h内完成，否则会影响尿化学成分及有形物质的改变。如不能及时分析，应置
如无特殊要求，均应采集清晨起床后的第一次尿，即晨尿检查。对于门诊和急诊的患者，可采集随机尿，易受食物、体位、活动等的影响。
２标本留取后应及时送检，以免细菌繁殖、细胞溶解或被污染等。送检标本时要置于有盖容器内，以免尿液蒸发影响检测结果。
３常规检验留取中段尿送检。细菌检验尿标本留取方法见后述。
４特殊检验项目标本留取请随时与相应检验科室联系。
５尿总蛋白(UPR)测定注意避免血红蛋白的污染,否则会使尿总蛋白假性升高；尿液中如含有免疫球蛋白轻链(如本一周蛋白)会使蛋白假性降低；应用多肽类药物治疗的病人，血液中的多肽会排泄入尿，可导致尿蛋白假性升高，如怀疑尿中有此成分，建议将尿液浓缩后作蛋白电泳。
三 粪便常规检验标本采集
粪便常规检查标本采集方法及注意事项：
１采集粪便标本的方法因检查目的不同而有差别，一般检验留取新鲜的自然排出的粪便 3～5g，必要时可肛拭子采取，放入干燥、清洁、无吸水性的有盖容器内，贴好标识送检。标本容器最好用内层涂蜡的硬纸盒，便于检查后焚毁。细菌检查的粪便标本应收集于灭菌封口的容器内，勿混入消毒剂及其它化学药品。
２盛粪便标本的容器必须有盖，有明显标记。要选取粪便的脓、血、黏液等异常成分进行检查，表面无异常时应从粪便表面、深处及粪端多处取材；采取标本后及时送检，否则可因 PH 及消化酶等影响，而使粪便中细胞成分破坏分解。
３不应留取尿壶或便盆中的粪便标本。若标本中混入尿液，可导致某些项目检测结果出现错误。粪便标本中也不可混入植物、泥土、污水等异物，易混淆实验结果。不应该从卫生纸或衣裤、纸尿裤等物品上留取标本，不能用棉签有棉絮端挑取标本。
４做大便隐血试验时，应嘱患者于检查前 3d内禁食肉类、含动物血的食物、某些蔬菜，禁服铁剂和维生素C 等对实验有干扰作用的药物。选取外表及内层粪便收集于合格容器内及时送检，长时间放置可使反应的敏感度降低。
５检查蛲虫卵需用透明塑料薄膜于半夜 12pm或早晨排便前，于肛门周围皱襞处拭取标本，并立即送检。
６检查血吸虫卵时应取黏液、脓、血部分，如须孵化毛蚴应留取不少于
７检查痢疾阿米巴滋养体时，应床边留取新排出的粪便，从脓血和稀软部分取材，并立即保温送实验室，并且实验室接受标本后应立即进行检查。
８细菌检验用标本应全部用无菌操作收集于灭菌封口的容器内。特殊检验项目留取标本时请预先联系。
四 浆膜腔积液检验标本采集
（一）浆膜腔积液检查标本
１浆膜腔积液标本一般由临床医生行无菌穿刺术采集标本。
２送检标本量：理学检查、化学检查、细胞学检查各留取 2mI；细菌学检查用无菌管采集标本，厌氧茵培养留取1 mI，结核菌检查留取10ml。
３标本采集后必须立即送检(否则可出现细胞变性，标本凝集，细菌溶解)。
４用于细胞学检查时,可在标本中加适量 EDTA盐抗凝．但还需留取1 管不加抗凝剂的标本用于观察积液的凝固性；化学检查标本宜用肝素抗凝。
（二）脑脊液标本采集
１由临床医师行腰椎穿刺术采集标本。
２采集后的脑脊液分别收集于 3 个无菌试管中，每管 1—2 ml，第一管作细菌培养，第二管作化学分析和免疫学检查,第三管作一般性状及显微镜检查（脑脊液常规）。
３标本必须立即送检，放置过久影响结果，如细胞破坏、变性或细胞包裹于纤维蛋白凝块中，使细胞计数降低，分类不准确等；存放的脑脊液葡萄糖会分解，使检测结果降低。
（三）胸、腹水标本采集
１由临床医师行无菌穿刺术，最好留取中段液体于消毒容器内，立即送检。
２为防止出现凝块、细胞变性、细菌破坏自溶等，标本中应加入抗凝剂。常规及细胞学检查宜用EDTA-2K抗凝，生化检查标本宜用肝素抗凝。
（四）关节腔穿刺液
标本采集后第1管作微生物及一般性状检查，第2 管用肝素抗凝作细胞学及化学检查。
（五）前列腺和精液检查
前列腺液标本应由临床医师进行前列腺按摩术采集，可直接滴在玻片上；若按摩不出前列腺液，可检查按摩后的尿液。疑为前列腺结核、脓肿或肿瘤的患者禁忌前列腺按摩。一次按摩失败或检查结果阴性，而明确有临床指征者，可隔3～5天后重新复查。
精液采集最好在实验室附近，室温应控制在 20～
（六）细菌培养之脑脊液、胸腹水穿刺液、关节腔穿刺液标本采集
１应在用药前采集,由临床医生以无菌条件下进行腰椎穿刺采集脑脊液 3～5ml，因脑膜炎球菌易自溶，流感嗜血杆菌也易死亡,故盛于无菌试管或小瓶中保温立即送检。或将脑脊液5ml直接注射于血培养儿童瓶中送检即可。
２穿刺液包括胸水、腹水、心包液、关节液及鞘膜液。一般由临床医生穿刺抽取。标本的采集应在患者用药之前，或停药 1～2 天后进行。胸水、腹水可抽取 5～10m1，心包液、关节可抽取 2～5ml，将所得穿刺液分别盛于含有和不含有抗凝剂的无菌试管或小瓶中，充分混匀后，立即送检。
五 微生物检验标本采集
微生物学检验标本的正确采集、运送及处理，与细菌的培养、鉴定结果有十分密切的关系；对可疑烈性呼吸道传染病（如SARS、炭疽、肺鼠疫等)患者采集标本时,必须按国家规范化要求严格注意生物安全；医生、护士、检验人员均应重视微生物学检验标本正确采集的有关问题，并有责任向患者及其家属进行正确采集标本的宣传和指导。
（一）微生物学检验标本采集、运送、验收和处理注意事项
１标本采集
（１）申请单标记必须清楚(姓名、性别、年龄、病例号、临床诊断、标本来源、采集时间、检查项目、抗生素应用情况等)，以便实验室能够合理选择培养环境和培养基；
（２）尽量在抗生素应用前采集标本，以提高阳性检出率和避免漏检；
（３）标本采集应严格执行无菌操作；
（４）咽拭、肛拭、伤口拭子等拭子标本，应插入运送培养基送检；
（５）痰、尿液、伤口拭子等混有正常菌群的标本，不可放入肉汤培养基内送检；
（６）采集标本的容器必须经灭菌处理，但不可用消毒剂。
２标本运送
（１）标本采集后应尽快送到微生物实验室；
（２）标本采集后在室温下超过2h未送达实验室，可视为不合格标本。
３标本验收
（１）实验室只能接受和处理合格标本；
（２）实验室对不合格标本退回必须说明原因，并应及时与临床联系。
４注意事项
（１）微生物检验样本必须按要求采集转运，否则将影响检查结果．并给评价其意义带来麻烦甚至误导。
（２）微生物样本极易被污染，污染的样本杂菌大量繁殖抑制病原菌生长，条件致病菌也是致病菌，如污染条件致病菌将误导临床，造成对患者的损害以及经济和时间的浪费。
（３）某些标本离体极易死亡，应在床边采取和接种或立即保温送至实验室检验。室温放置或延迟送检，可使检出的阳性率降低；不能使用冷藏的样本检验。
（４）厌氧菌样本采取必须隔绝空气，混入空气的样本影响检验结果，不能使用。
（二）微生物学检验标本采集和处理
１尿液标本采集和处理
通常留取晨起第一次尿液(此时尿液在膀胱内储存 4h 以上)；尿液采集后要及时送检，并保证 2h 内接种；不能及时送检和接种时，尿液应置 4～8℃冰箱保存；冷藏标本应于 8h 内接种；怀疑沙门氏菌感染时，应于发病2w左右采集尿液，怀疑钩端螺旋体感染时，应于发病后 2w采集尿液，上述时间此时阳性率高。尿液微生物学检验标本采集方法如下：
（１）中段尿采集法：成年男性和女性分别用肥皂水或 1：1 000高锰酸钾水溶液清洗尿道口和外阴部，再用灭菌水冲洗尿道口，无菌生理盐水冲去消毒液，然后排尿弃去前段尿液，收集中段尿 5～1 0ml盛于带盖的无菌容器内送检。
（２）导尿法：用导尿管导取 10～15ml 尿液，置灭菌容器中送检；长期留置导尿管者应更换新导尿管留尿；留置导尿时，用无菌消毒法消毒导尿管外部及导尿管口，用无菌注射器通过导尿管抽取尿液送检(不可采集尿液收集袋中的尿液送检)；
（３）集尿法：怀疑结核分枝杆菌感染时，于清洁容器中留取 24h尿液，取其沉渣1 0～1 5ml送检。
（４）耻骨上膀胱穿刺法：培养结果与临床病情矛盾时可采用此法，一般较少应用；
（５）肾盂尿采集法：必须由临床医生采集。
注意事项：正常人的尿液是无菌的，除外尿道有正常菌群外，还有条件致病菌，而这些细菌又是尿路感染中常见的致病菌，故应该注意无菌采集。
２粪便标本采集和处理
（１）采集时间：
① 腹泻患者于急性期，尽量在用药前采集粪便；
② 伤寒患者于发病2w以后采集粪便；
③ 怀疑霍乱时立即采集粪便送检。
（２）采集方法：
① 自然排便法：取新鲜粪便的黏液、脓血、或絮状物等有意义成分，2～3g或 1～2 m1，盛无菌容器内或置于保存液或增茵液内送检；若疑似霍乱者应置于碱性蛋白胨水中(PH8.6)。② 直肠拭子法：难以获得粪便或排便困难患者及幼儿可采用此法，将拭子前端用无菌甘油或生理盐水湿润,然后插入肛门约 4～5cm(幼儿 2～3cm)，轻轻在直肠内旋转。擦取直肠表面粘液后取出，盛于无菌试管中或保存液中送检。
３痰及下呼吸道标本采集和处理
（１）自然咳痰法：①晨痰为佳；②先冷开水洗漱、清洁、口腔和牙齿；③再用力咳出呼吸道深部的痰，吐至无菌容器中；④痰量不得少于1ml；⑤痰咳出困难时可先雾化吸入 NaCI溶液(
（２）小儿取痰法：用弯压舌板向后压舌，将拭子深入咽部，小儿因压舌板刺激引起咳嗽，喷出的肺或气管分泌物粘在拭子上即可送检。
（３）支气管镜、支气管穿刺、支气管肺胞灌洗等采集法，此采集方法必须由医生操作。
① 气管导管法：气管插管吸取下呼吸道痰液。
② 气管镜采集法：用气管镜在肺内病灶附近用导管吸取或活用支气管刷直接取得。
（４）呼吸道标本采集方法：鼻咽拭子法，先用清水漱口，对光坐，头向上仰，口张大，用压舌板轻压舌根，用棉拭子在病人咽后壁，悬雍垂后侧涂抹数次．立即放入无菌试管中。
注意事项：痰经过口腔，所以患者应用清水漱口数次，尽量排除口腔内大量杂菌。
４血液及骨髓培养标本
（１）血培养标本采集指征：
对入院的危重患者未进行系统性抗生素治疗前，应及时进行血液培养，患者出现以下体征可作为血培养的重要指征：
① 发热(≥
② 寒热
③ 白细胞增多(>10×109／L，特别是在有“核左移”未成熟的或带状的白细胞增多时)
④ 粒细胞减少(成熟的多核白细胞<1×109／L)
⑤ 血小板减少
⑥ 皮肤粘膜出血
⑦ 昏迷
⑧ 多器官衰竭
（２）最常用的方法为血液增菌培养法。培养瓶分为需氧瓶和厌氧瓶两种。每瓶需要 8～10ml。儿童瓶为需氧瓶每瓶需血液1～3ml，另外，脑脊液和胸腹水也可用血液增菌培养瓶，但仅需要儿童瓶，标本量与血液相同。
① 抗生素治疗前，严格无菌静脉采血 8～10ml(儿童 l～
② 无菌注入专用培养瓶(成人、儿童、需氧菌、厌氧茵、L型茵需要不同培养瓶)中送检；
③ 如已用抗生素不能停用时，可于48h内分别于下次用抗生素之前，采取 6份血液标本送检；
④ 必要时可需氧菌、厌氧茵(占10％)和 L型菌同时培养；
⑤ 疑为心内膜炎时，为提高阳性检出率，可酌情不同部位、不同时间，多次采血或动脉采血进行培养；
⑥ 必要时可取骨髓l～2 ml，无菌注入专用培养瓶中送检。
注意事项：血液在正常情况下为无菌标本，应严格按照无菌操作，避免杂菌污染。一般病人在发病初期 1~2天或发热高峰时采集血液标本，用一次性注射在肘静脉采血，采血前局部皮肤应彻底消毒。对亚急性细菌性心内膜炎等病人，应从肘动脉或股动脉采血为宜。
５脑脊液
（１）采集时间：怀疑脑膜炎时应立即采集脑脊液，最好是在应用抗生素之前采集脑脊液。
（２）采集方法：无菌腰穿采集脑脊液3～
６穿刺液培养标本
（１）穿刺液培养标本包括胸水、腹水、心包液、关节液、鞘膜液等。
（２）采集时间：一般在用抗生素等抗菌药物治疗之前，或在停止使用抗菌药物之后 2～3d采集标本。
（３）采集方法
① 无菌操作穿刺抽取标本或外科手术采集标本；
② 标本采集量应>1ml(结核分支杆菌培养时应为 l～
③ 标本采集后注入无菌小瓶或无菌试管中立即送检；
④ 可在盛器中先加入灭菌肝素然后再加入穿刺液，以防止穿刺液凝固(0.5ml肝素可抗凝 5ml标本)。
7胃液及胆汁培养
标本抽取空腹胃液5 ml，置无菌管内送检；胆汁培养标本由十二指肠引流法或胆囊穿刺法或手术中留取胆汁，采集胆汁量为5 ml，置无菌管内送检；胃液和胆汁采集后必须立即送检。
8脓汁和病灶分泌物培养
标本采集前局部消毒后无菌采取脓汁或病灶分泌物或组织。标本采集后立即置无菌管内送检。
9眼、耳、鼻、咽拭子培养标本
（１）采集眼分泌物：先用无菌生理盐水冲洗眼部,然后用棉拭于拭干，再用无菌棉拭于采集分泌物。
（２）采集咽分泌物：先用清水撤口．用压舌板将舌向下向外压，将咽拭子在咽后壁或悬雍垂后侧涂抹数次，切勿接触口腔和舌粘膜。
（３）采集耳、鼻或鼻咽分泌物：直接用拭子涂抹病灶部位,切勿接触周围粘膜或皮肤。
标本采集过程中应注意避免粘膜上的正常菌群污染,标本采集后连同拭子一起置无菌管内送检。
10泌尿生殖道培养标本
（１）尿道分泌物：清洗尿道、采取尿道、溢出的脓性等分泌物,或用无菌拭子插入尿道 2-4cm处轻轻转动后取出,置无菌试管中送检。
（２）阴道、宫颈分泌物、通过阴道扩张器,用灭菌拭子采取阴道口或宫颈管 1-2cm处分泌物,置无菌试管中送检。避免阴道分泌物污染拭子。
（３）宫腔分泌物：在必要时用外套保护膜的灭菌导管抽取。
（４）前列腺液：清洗尿道、冲洗膀胱后用前列腺按摩法采取前列腺液于无菌容器内送检。
（５）精液:受检者应5天未排精,清洗尿道后手淫或体外排精法,射精于无菌容器内送检。
（６）溃疡分泌物：灭菌生理盐水溶液清洗患处,用无菌拭子取其边缘或基底部的分泌物,置无菌试管中送检。
11烧伤感染培养标本
烧伤 12h 后无菌棉拭子操做采集标本；要注意从多个创面取样,烧伤严重感染时易发生败血症,创棉取样同时应采集血样送做血培养(必须同时做需氧菌培养和厌氧菌培养) 。
12厌氧菌感染培养标本
（１）标本采集
① 标本不能被正常菌群污染,采集时尽量避免接触空气,立即送检,严格遵守无菌操作
② 血液及其他体液(胸水、腹水、心包液、关节液、胆汁、脑脊液等)注入厌氧血培养,立即送检
③ 深部脓肿,在病灶部位开放前取材,可用针管抽取,针头用无菌胶塞密封,也可用血气采集针抽取,立即送检
④ 抽出液体标本后,要尽快排除注射器内的空气。
（２）标本运送
① 标本采集后不得冰箱储存,必须尽快(半小时内)送实验室
② 运送方法:a注射器运送(标本抽取后尽快排除空气)或接种道专门的运送培养基中直接运送b含运送培养基的无氧小瓶运送c 厌氧罐运送(组织块);d 大量液体标本运送时要装满标本瓶兵立即驱氧,加盖运送e 一般不采用棉拭子法
（３）建议使用微生物检验组合:
① 细菌学涂片:快速回报标本中可能的病原微生物
② 普通细菌培养：(3天);
③ 厌氧培养：(7天) ;
④ 真菌培养：(5 天);
⑤ 微生物分子生物学检测：(2天)
13真菌感染培养标本
（１）浅部真菌感染标本采集
① 皮肤：常规消毒皮肤，从皮肤癣菌皮损边缘刮取鳞屑，置无菌平皿内送检，皮肤溃疡则采集病损边缘脓汁或组织；
② 指(趾)指甲消毒指(趾)指甲并去掉其表面部分，取可疑病变部分，用刀片修成小薄片 5～6 片置无菌容器内送检；
③ 毛发：采集根部断折处，至少5～6 根送检。
（２）深部真菌感染标本采集
① 血液：无菌采血8～
② 脑脊液采样量不少于3～
③ 呼吸道及泌尿生殖道深部真菌感染标本采集同一般菌培养标本。
14皮肤（主要指伤口、创面脓液等）标本采集方法
（１）对采集标本部位应首先清除污垢，再以碘酒或酒精消毒，防止皮肤表面污染菌混入影响检验结果，盛放标本器皿应无菌。
（２）封闭性脓肿：病灶局部消毒后，以无菌干燥注射器穿刺抽取．将采集的脓液注入灭菌试管．对疑似厌氧菌的脓液，抽取脓液后立即排出注射器内的空气，同时将针头插入灭菌橡皮塞，防止空气进入。
（３）开放性脓肿及脓性分泌物：先做局部消毒再用无菌棉拭子采取脓液及病灶深部分泌物，并置无菌容器内送检。
（４）大面积烧伤的创面分泌物因创面的部位不同，细菌种类不同，故应用无菌棉拭子多部位采集脓液及分泌物．置于无菌试管。注意事项：烧伤 12小时内的创面及分泌物中细菌检出率较低。
15空气培养标本采集方法
（１）采样时间：选择消毒处理后与进行医疗活动之前采样。
（２）采样高度：与地面垂直高度80~1 50cm
（３）布点方法：室内面积≤30 m2，设一条对角线上取三点，即中心一点，两端各距墙 1m处取一点；室内面积>30 m2，设东、南、西、北、中5点，其中东、南、西、北距墙 lm。
（４）采样方法：用9cm直径普通培养琼脂平板在采样点暴露 5分钟后送检培养。
（５）标本保存：
① 采样后必须尽快送检。
② 在平皿上注明各采自哪个室．用胶布把平皿和平皿盖子固定好以免在送检途中平皿和平皿盖子分离而造成污染。
六 病理标本采集
（一）病理组织标本采集、送检要求
１取标本宜用锋利器械，切忌撕拉及用齿钳夹持组织，以免组织变形，影响诊断；
２病变的活体组织检查，采取组织部位要准确，如肿瘤组织的活检宜在肿瘤与正常组织交界处采取，勿取坏死组织，否则难以诊断；
３送检组织不宜太小或过少，手术标本应全部送检，以便做全面检查及诊断；
４较小病灶应加以标识，较小组织如胃粘膜活检、支气管镜活检等应平铺于小滤纸片上固定送检；
５取下的标本需立即放在 10％福尔马林内固定(市售甲醛 1 份+自来水 9 份)，固定容量应为标本体积的 5倍以上；
６标本容器要求洁净，口径不宜太小，否则取材时标本难以拿出；
７避免乱切标本，而影响大体检查及取材，如因临床需要或标本太大需剖开固定时，需按正确的剖检方法剖开标本；
８标本容器上应准确认真地填写病人的姓名、标本名称、切取部位、数量及条形码，以便查对；装好标本后拧紧瓶盖或密封袋口，防止液体泄露；如为多份标本应分装于多个容器送检，并分别详细标明；
９会诊病例需送检全部切片，如制片质量差、需做免疫组化或其它特殊检测者，需同时提供相应蜡块。
（二）细胞学标本采集、送检注意事项
１所采集标本必须新鲜，并有足够的数量；
２盛放的容器及制作涂片的玻片必须清洁；
３涂片操作时动作轻巧，以免损伤细胞，涂片要厚薄适宜，细胞成分涂在玻片右侧2/3范围内；
４涂片必须立即固定于95％的酒精内，15 分钟后取出晾干，在左侧 1/3处贴条形码；
５送检时用干净牙签将玻片分隔，涂有细胞面（即正面）向内，以免摩擦；
６详细准确填写公司专用细胞学申请单，并贴上与涂片相对应的条形码；
７宫颈TCT检查标本采集时，避免经期取样，并要求24 小时内禁止盆浴、性生活及近期阴道上药；
８有传染可能的标本，如结核性胸腹水、肺结核病人的支气管纤维镜灌洗液等，请在申请单上注明，以引起检查者的重视。
（三）特殊项目--液基超薄细胞学检测(TCT)的标本采集方法
１病人准备：病人在检查前三天停止性生活，检查前停止外用药，并清洗外阴部。
２标本采集：采集标本应用专用采样器，医生用窥阴器扩开阴道后先观察，如果宫颈表面粘液、血液较多者，应先用棉签轻轻擦净粘液血液，再用采样器抵住宫颈表面转动 5～10 次。然后取出采样器迅速放人保存液内均匀摇动数次，再拧紧瓶盖，在瓶身上写上病人姓名、贴上条形码，填写送检单，送检。
采样 漂洗 拧紧
３标本类型：宫颈脱落细胞。
４标本保存：装有标本的保存液瓶在常温下可保存 1个月，如放入冰箱内可保存时间更长。
５注意事项：
（１）用取样器采集标本时，取样器前面的长毛刷应插进颈管内以便采集到颈管上皮及移行区上皮细胞，采样时动作应轻柔，用力适中，太大容易损伤宫颈，太小不能采到足够用于诊断的上皮细胞；（２）送检单及标本瓶上应写清病人姓名、年龄，并贴上条形码，送检单应详细填写各项内容，特别是月经情况、用药史及妇科治疗情况，以便正确诊断．如有特殊情况及要求亦请写明。
第三章 标本正确采集的医学意义
一 取样技术引起的分析前变异
姿势、静脉加压的持续时间、最后一次进食、体力付出、诊断方法、血样采集时间、溶血、输液、外源性污染等。
1姿势
从仰卧位到直立位的过程中．大约有 8％的体内水由血管中进入间质组织中。患者由直立位转为坐位或仰卧位后，抽血测得的蛋白质、蛋白质结合物、细胞比至少让患者仰卧 10 分钟后抽血所测定的结果要高 3％～8％。对于一些参数，由上述原因所导致的影响要比分析不精确的影响还要大．例如血红蛋白、红细胞计数、白细胞计数、红细胞压积、总蛋白、胆固醇、白蛋白、免疫球蛋白和钙离子。这种改变在有水肿的患者中比在健康人中更明显。人体直立、手臂下垂时的血液浓度比保持手臂于心房水平要高。由于体内循环的改变，由仰卧位到直立位可以导致去甲肾上腺素、醛固酮和肾素水平的升高两倍以上。
2静脉加压的持续时间
静脉加压和体位从水平位变为垂直位有相同的效应。所有的高分子物质增高，如 10分钟的加压时间可使总蛋白升高20％。最多2分钟的短期加压几乎不引起什么变化。如对水肿患者的手臂加压，血液浓度的问题将非常突出。
3最后一次进食
进食可引起血中葡萄糖、磷酸盐和胆红素的增加，ALT和钾离子明显增高和尿酸、蛋白质、钙离子、胆固醇中到轻度增高。脂肪摄入的程度决定了甘油三脂的水平。O’Lewis阳性血型的人在进食脂肪餐后可呈现碱性磷酸酶明显升高。在实际诊断为目的时，低脂肪的简单早餐对许多血液成分的浓度无明显影响。而另一方面,如果要评估脂肪代谢,就必须坚持12小时禁食葡萄糖耐量试验前，要求连续几天摄入高碳水化合物。
4体力付出
体液临时性的从血管内流入间质中,致使血液中蛋白质、蛋白质结合物和血细胞浓度升高。经过几个小时的运动，尤其是对未经训练过的个体，由于体力所致的细胞损伤导致肌肉组织中的酶如 AST、LD、CK 的浓度升高。
5诊断方法
诊断方法对临床实验室结果有许多影响。在采血样之前按摩前列腺可引起酸性磷酸酶的升高．在糖耐量试验中，钾、磷和镁离子浓度升高。肌肉注射一些药物如苯二氮卓类、度冷丁、喷他左辛、氯丙嗪、利多卡因、苯巴比妥、异丙嗪，可引起 CK 和肌红蛋白的升高。外科手术可引起急性时相蛋白浓度的升高，从而导致红细胞沉降率加快。
6血样采集时间
在每日的不同时间，铁浓度都有明显的变化，在下午的变化最大；而皮质醇、肾上腺素和去甲肾上腺素在早晨的变化最大；肾素、醛固酮、生长激素和甲状旁腺素在晚上的变化最大。
7溶血
长时间过度的加压可使血管内溶血，用注射器采血时用力过大或不正确的穿刺吸入静脉周围血导致血管外溶血。溶血可致钾离子浓度升高和LD、ALT、AST和酸性磷酸酶活力的升高。如血红蛋白浓度超过
8输液
不可在输液同时及同侧取血样检测。
二 需要考虑的生物因素
1性别
许多实验室检测都列出了不同性别的参考值。对一些被测物，性别间的差异可能是由于体重、体表面积和肌肉重量的不同而导致的。下列试验在男性中所测得的结果比在女性中所测得的高：GGT、甘油三酯、尿酸、肌酐、氨、CK、AST、ALP、铁、尿素、胆固醇。
2种族
就酶的参考值来说，种族不会导致明显的差异。就一些底物如胆固醇、甘油三酯、尿酸来说，不同社会经济阶层的饮食习惯不同所导致的差异要比种族不同所导致的差异大。在血型的频率分布上，种族差异起着很重要的作用，同样，种族差异在一些血浆蛋白表型和它们蛋白质浓度之间的关系中也起一定的作用，如结合珠蛋白和a1一抗胰蛋白酶。
3年龄和老化
钙、磷酸盐、总蛋白和白蛋白水平下降．而葡萄糖、尿素、胆固醇的浓度和 LD 活性增高。单克隆丙种球蛋白病发病率上升和肌酸清除率的下降都是与年龄相关的改变。肌酸、ALP、GGT的升高和男性中年龄相关性尿酸的增高仍没有被明确的证实。与成人相比，儿童期的酶活性较高，而铁、铜和免疫球蛋白的浓度较低。
4生物节律
个体的不规则的血液成分在1天内的变化必须与人体的生理节律相鉴别。后者是 24h内有规律的反复出现的特定现象。
时区改变时．常常出现生物节律的改变．如穿越经线。机体需要 6～8h 去适应新的时区。并不是所有的人都出现昼夜节律和生物节律的改变。这些改变常伴有暂时性的血液成分的改变(如在早晨常有几分钟的皮质醇的改变)或血液成分在较长时间内发生变动。个体间的变化、生理节律和长期的变动只在纵向检测时有意义。在横向检测中，因为有参考值范围，所以这些改变没什么意义。
5体重
肥胖的男性有较高浓度的尿酸、胆固醇、LD、胰岛素、餐后葡萄糖、AST、肌酐、总蛋白和尿酸。磷酸盐在男性和女性肥胖者中较低，而钙离子只在女性肥胖者中较低。
6酒精
饮酒几分钟后．AST 会轻度升高．3h 后达到最大，但仍在不饮酒的参考范围内。一段时间后，GGT 轻度增高．对别的酶的影响很难检测到。饮酒后，甚至是少量的饮酒后，在一些个体中可以检测到甘油三酯持续几个小时或几天的大量增高。慢性饮酒可显示持续性的GGT水平升高。
7紧张
儿茶酚胺和 1 7 一羟皮质类甾醇的产生增加。皮质醇、肾素、醛固酮和生长激素的血浆水平升高。促甲状腺激素和催乳素的血浆水平也可能增加。
8卧床休息肾脏排泄钠、钙、氯化物、磷酸盐和氨增加．ALP的血浆水平升高。
9外科手术
对血细胞计数和血清中酶活性和底物浓度的影响取决于所患的疾病和手术类型。通常，手术后的第一个 24h内会发生下列改变：血红蛋白浓度下降、白细胞增多、红细胞沉降率升高，像 C反应蛋白等急性时相蛋白增加、暂时性的中度高胆红素血症和尿素增高。CK 水平明显升高，尤其是在腹部或胸腔手术时，其水平在最高参考限值的3～10倍．胆囊切除术后，经常可见到中度转氨酶升高，但在别的外科手术中，很少见到转氦酶的升高。
10电离辐射
电离辐射治疗，由于肿瘤组织的溶解，常可导致血小板和白细胞的下降，尿酸升高至1 785 umoI／L(30mg／d1)。
11怀孕
ALP、胆固醇、甘油三酯、铜、血浆铜蓝蛋白、运铁蛋白、白细胞计数、孕酮、雌二醇、雌三醇和催乳素升高。随怀孕而上升的人绒毛膜促性腺激素(hCG)和甲胎蛋白。
铁、镁、钙、总蛋白、白蛋白、胆碱酯酶、血红蛋白、红细胞压积和红细胞计数下降。
12口服避孕药(OC)
服用 OC 后，血清中的酶在一定周期内升高，然后降低。任何升高都保持在正常值范围内。甲状腺素结合球蛋白和血浆铜蓝蛋白在女性分别升高44％和 70％。
三 影响检验结果的因素
在临床医疗工作中．临床医生面对尿沉渣报告中极少量的红血球，会针对导尿或女性患者与男性患者，给予不同的解读。但是对未怀疑的疾病，检验室居然出现阳性报告，临床医师绝不能掉以轻心，简单认定检验报告有误，应小心求证以得到正确的解释。另外尚有一些饮食、生理现象、标本处置不当、药物因素，也会造成判读的偏差。本节主要就影响检验结果的疾病外因素予以简单介绍。
（一）饮食因素
１必须空腹(通常指禁食8～10小时，其间只允许喝白开水)的检验项目如：G L u、脂类(L ipid Profile)、铁(FE)、总铁结合力(TIBC)、转肽酶(GTT)、胆汁酸(BileAcid)、胰岛素(1nsulin)等。其它血清学检验如需血清澄清最好空腹：如各种病毒抗体等。
２空腹超过48小时可能会造成胆红素(BIL)两倍以上的增加，而 Glu、白蛋白(ALB)、补体 (ComplementC3)及转铁蛋白(Transferrin)下降。
３餐后立即抽血，造成高K 低P，混浊的血清其BlL、LDH、TP增高，有可能造成 UA、BUN 降低。
４高蛋白饮食者，其BUN、尿酸(Urate)高而高嘌呤(Purines)食物影响的当然就是 Urate增高。
５口服避孕药使T4(RlA)、TG、ALT、FE、GGT升高，ALB低等．可影响的检验报告据称有 100多项。
６酒精可导致检验结果立即上升的有：UA、乳酸(Lactate)；嗜酒者的影响如：GGT、ALT、TG,成瘾者甚至影响其它如：BlL、AST、ALP。
（二）生理因素
１怀孕造成甲胎蛋白(AFP)、AMY、胆固醇(CHOL)、甘油三酯(TG)偏高，BUN、NA、ALB偏低。
２剧烈运动后,CK、CREA、BUN、UA、WBC、K+、BlL、LACT、高密度脂蛋白胆固醇(HDL—C)会升高。运动员的LDH、BUN 较高。长期的运动促使 HDL—C、Lactate等升高。
３采血部位、姿势和止血带的使用
（１）采血时要避开水肿、破损部位,应“一针见血”,防止组织损伤，外源性凝血因子进入针管；如果采血过慢或不顺利，可能激活凝血系统．使凝血因子活性增高、血小板假性减低。输液病人应在输液装置的对侧胳膊采血，避免血液被稀释。决不能在输液装置的近心端采血。
（２）姿势的影响结果。卧姿、坐姿或站姿，由于造成静脉承受压力不同，会造成影响(站姿较高)如：TP、ALB、CA、HCT、ALT、FE、CHOL 及尿中儿茶酚胺(Catecholamines)。测血中 Catecholamines 时,采血前一周,应避免抽烟，食用如核桃、香蕉及肾上腺素类(epinephrine—like)药物；保持平静勿使其受压力、兴奋等情绪变化．仰卧三十分钟后抽血。
（３）对于血色素、白细胞计数、红细胞计数、红细胞比积等检验指标来说．卧位采血与坐、立位采血结果有区别。正常人直立位时血浆总量比卧位减少12％左右，血液中以上成分不能通过血管壁转移到间质中去，使其血浆含量升高5％～1 5％。
（４）止血带压迫时间不能过长,最长不超过 1 分钟。压迫时间过长,可引起纤溶活性增强，血小板释放及某些凝血因子活性增强，影响实验结果。
（５）肥胖人士除了 GLU、CHOL、UA 普遍偏高外,肥胖男性尚会有 CREA、TP、HtGB、AST 偏高及 P偏低的现象,而肥胖女性则有CA偏低的情形。
（三）时辰影响因素
１皮质醇(Cortisol)在睡眠时浓度会增加,因此上下午所测之值可能有明显差异,最好于上下午各采血一次，其它如尿钾(可造成5倍之改变)、黄体生成素(LH)、卵泡刺激素(FSH)。
２促甲状腺素(TSH)在每日不同时辰，其浓度也会出现若干变化。
３Transferrin高值出现于4PM--8PM。
４WBC及LYM早晨较高，嗜酸粒细胞(EOS)下午较低。
５TG、P、BUN、HCT的高值出现于下午BIL反之。
６性别、昼夜节律、季节、海拔高度对试验结果的影响:如晨 6 点左右皮质醇值达最高峰，随后逐渐降低,午夜最低。
（四）样本处置不当
１溶血：LDH、HBDH、BlL、AST、CK、CKMB、AST、MG、ACP、K 偏高。其它影响较小的，诸如凝血因子、蛋白质分析、ALP、FE、P。等在交叉配血试验中血样溶血严重干扰对结果的判断。
红细胞膜完整性被破坏会严重影响实验结果的项目主要有：LDH、K+、Hb、ACP；有值得注意的影响的项目主要有：Fe、ALT、T4；有轻微影响或不太受影响的项目主要有：TP、ALB、ALP、．AST、TBIL、WBC、APTT、TT、Cr、Urea、UA、P、Mg 、Ca。
２未分离血清过久：K+、LDH、FE、AST(可能)偏高，GLU、ALP(可能)偏低。
３日晒：WBC、PLT、ESR偏高，BlL偏低。
４禁止从静脉注射处、套管处取血，严重影响GLU、电解质及凝血因子报告之准确性。
５绑止血带时间及握拳会影响电解质、Lactic Acid、PC02、pH。
６微血管穿刺样本可用于血细胞分析、电解质及一般生化检验, 但有可能挤入组织液造成不准确的结果。
（五）药物因素
1抗生泰药物
青霉素类和磺胺类药物能增高血液中尿酸浓度，常误报作“痛风阳性”。磺胺类抑制肠内细菌繁殖，使尿胆素不能还原为尿胆原，无法得出尿胆原的正确结果。
2镇痛消炎药物
阿斯匹林、氨基比林等会使尿中胆红素检测值升高；吗啡、杜冷丁和消炎痛、布洛芬等，可导致检验中淀粉酶和脂肪酶含量明显升高，在用药后4小时内影响最大，24 小时后消失。
3抗癌药物
绝大多数抗癌药物对人体造血系统有抑制和毒害作用，可导致血液中红细胞、白细胞、血小板和血红蛋白数量的减少(少数药物可使血细胞异常升高)，肝功能改变，有的使血脂值升高。其中甲氨蝶啶抑制骨髓，且损害肾功能；硫唑嘌呤损害肝功能，出现黄疸；阿糖胞苷使谷丙、谷草转氨酶异常升高。
4激素类药物
雌激素类药物能影响人体中血脂的正常含量，使葡萄糖耐量试验减低，并可引起血小板和红细胞量的减少。
盐皮质素易致水、钠潴留和低钾血症。肾上腺素减少钙、磷的吸收，且排出量增加，故血钙、血磷偏低，另外可明显升高血糖值。
5利尿药物
临床上常用的为双氢克尿噻、速尿、三氯噻嗪和利尿酸等。典型的临床反应为：低血钾、低血容量和低血氯，长期应用后可见高氮质血症和高尿酸血症。
6抗糖尿病药胰岛素使用后可出现低血糖症，这已为大家所熟知。其它抗糖尿病药(如 D 60、氯磺丙脲等)， 可损害肝功能，使谷丙、谷草转氨酶升高，出现黄疸，血细胞减少等。
7抗癫痫药
如苯妥英钠因抑制叶酸的吸收，常见巨细胞性贫血。因轻度抑制骨髓，故使血细胞(尤其是白细胞和血小板)减少，偶有再生障碍性贫血的报道。卡马西平可致粒细胞、血小板减少，长期应用损害肝功能。
8使检验标本着色的药物
主要为药物使尿液染色，从而干扰比色测定和荧光分析的测定结果。如服利福平后尿呈橙红色；服维生素B2、黄连素等使尿呈黄色；服苯琥珀后尿呈桔红色；服氨苯喋啶后使尿呈绿蓝色，并有蓝色荧光。许多药物对大便的色泽也产生影响。为了最大限度地避免和清除“药物干扰检测”这一现象，临床医师、检验医师和药师必须结合不同给药途径给药后的药物代谢动力学，判定检验结果时要综合考虑给药途径、药物的血药浓度水平、药物的半衰期、排泄途径和清除率等。许多药物对检验结果的干扰，常与血药浓度呈正相关，故检验取样应尽量避开血药高峰期。当然，疾病条件许可时，应提早几天停药，以完全排除药物对检测影响，但这并不是每个病人都能做到的。